RIPA Lysis Buffer (Weak)

1.细胞样品：

(1)融解RIPA Lysis Buffer，混匀。取适当量的裂解液，在使用前加入PMSF，使PMSF的最终浓度为1mM。可根据实验需要加入适当的上述蛋白酶磷酸酶抑制剂Cocktails。

(a)贴壁细胞：弃培养液，用PBS、生理盐水或无血清培养液洗一遍(如果血清中的蛋白没有干扰，可以不洗)。按照6孔板每孔加入150-250 uL裂解液的比例加入裂解液。用枪吹打数下，使裂解液和细胞充分接触(一般情况下裂解液接触动物细胞1-2s后，细胞就会被裂解)。植物细胞宜在冰上裂解2-10 min。

(b)悬浮细胞：离心收集细胞，轻轻涡旋或者弹击管底使细胞尽量分散。按照6孔板每孔细胞加入150-250微升裂解液的比例加入裂解液。轻弹管底以便充分裂解细胞。充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。如果细胞量较多，必需分装成50-100万细胞/管，然后再裂解。大团的细胞较难裂解充分，而少量的细胞由于裂解液易和细胞充分接触，相对比较容易裂解充分。

(c)细菌或酵母：取1 mL菌液或酵母液，离心去上清(或可使用PBS洗涤一次，充分去除液体)，轻轻涡旋或者弹击管底把细菌或酵母尽量分散。加入100-200 uL裂解液，轻轻涡旋或者弹击管底以混匀，冰上裂解2-10min(如果希望获得更好的裂解效果，细菌和酵母可以分别使用溶菌酶和破壁酶(Lyticase)消化，然后再使用本裂解液进行裂解)。

(2)充分裂解后，10000-14000g离心3-5 min，取上清，即可进行后续的PAGE、WB和IP等操作。

2.组织样品：

(1)把组织剪切成细小的碎片。

(2)融解RIPA Lysis Buffer (Weak)，混匀。取适当量的裂解液，在使用前加入PMSF，使PMSF的最终浓度为1mM。可根据实验需要加入适当的上述蛋白酶磷酸酶抑制剂Cocktails。

(3)按照每20  mg组织加入150-250  uL裂解液的比例加入裂解液。(若裂解不充分可适当增加裂解液用量，如果需要高浓度蛋白样品，可适当减少裂解液的用量。)

(4)用玻璃匀浆器匀浆，直至充分裂解。或把组织样品冷冻后液氮研磨，研磨充分后加入裂解液进行裂解。

(5)充分裂解后，10000-14000g离心3-5min，取上清，即可进行后续的PAGE、WB和IP等操作。

注意事项

(1)裂解液用量说明：通常6孔板每孔细胞或者1 mL的菌液或酵母液中的细菌和酵母量加入150 uL裂解液已足够，若细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到200 uL或250 uL。每100万动物细胞用100 uL本产品裂解后获得的上清，其蛋白浓度约为2-4 mg/mL，不同细胞有所不同。

(2)每20mg冻存的小鼠肝脏组织用200 uL本裂解液裂解后获得的上清，其蛋白浓度约为15-25mg/mL，不同状态的不同组织有所不同。

(3)如果组织样品本身非常细小，可以适当剪切后直接加入裂解液裂解，通过强烈涡旋使样品裂解充分。然后同样离心取上清，用于后续实验。直接裂解的优点是比较方便，不必使用匀浆器或研磨设备，缺点是不如匀浆或研磨那样裂解比较充分。

(4)RIPA裂解液的裂解产物中经常会出现一小团透明胶状物，该透明胶状物为含有基因组DNA等的复合物，是正常现象。在不检测和基因组DNA紧密结合的蛋白情况下，可以直接离心取上清用于后续实验；如果需要检测和基因组紧密结合的蛋白，则可以通过超声处理打碎打散该透明胶状物，随后离心取上清用于后续实验。如果检测一些常见的转录因子，如NF-kappaB、p53等时，通常不必进行超声处理，即可检测到这些转录因子。

(5)为取得最佳的使用效果，建议适当分装后使用尽量避免反复冻融。

(6)裂解样品的所有步骤都需在冰上或4°C进行。